A fogbél gyulladásos folyamatai meghatározó szerepet játszanak a fájdalom kialakulásában és a pulpa biológiai válaszaiban. A tranziens receptor potenciál (TRP) ioncsatornák a szenzoros és gyulladásos folyamatok fontos mediátorai, azonban szerepük a fogpulpa működésében még nem teljesen tisztázott. Jelen értekezés célja a TRP csatornák – különös tekintettel a TRPA1-re – expressziójának vizsgálata humán fogpulpa-sejtekben, valamint a gyulladásos környezet hatásának elemzése volt. Primer humán fogpulpa-sejtkultúrákban poly(I:C) kezeléssel gyulladásos választ indukáltunk, és kimutattuk, hogy a TRPA1 expressziója szignifikánsan emelkedik, míg egyes más TRP csatornák expressziója csökken. Eredményeink alapján a TRPA1 fontos szerepet játszhat a gyulladásos válaszok szabályozásában. A sejtszintű vizsgálatok mellett optimalizáltuk a fogszövetek dekalcifikációját RNS-alapú vizsgálati módszerekhez. Megállapítottuk, hogy a Morse-oldat alkalmazása megfelelő egyensúlyt biztosít a szövetszerkezet megőrzése és a molekuláris vizsgálatok kivitelezhetősége között. Eredményeink hozzájárulnak a fogbél gyulladásos mechanizmusainak jobb megértéséhez, és új szempontokat nyújtanak a TRP csatornák szerepének értelmezéséhez.

Inflammatory processes of the dental pulp play a crucial role in the development of pain and in the biological responses of the pulp. Transient receptor potential (TRP) ion channels are important mediators of sensory and inflammatory processes; however, their role in dental pulp function is not yet fully understood. The aim of the present dissertation was to investigate the expression of TRP channels – with particular emphasis on TRPA1 – in human dental pulp cells, and to analyze the effects of an inflammatory environment. Inflammatory responses were induced in primary human dental pulp cell cultures using poly(I:C) treatment, and it was demonstrated that TRPA1 expression was significantly upregulated, while the expression of certain other TRP channels decreased. Based on our results, TRPA1 may play an important role in the regulation of inflammatory responses. In addition to cellular-level investigations, we optimized the decalcification of dental tissues for RNA-based analytical methods. We found that the use of Morse solution provides an appropriate balance between the preservation of tissue structure and the feasibility of molecular analyses. Our findings contribute to a better understanding of inflammatory mechanisms in the dental pulp and provide new insights into the role of TRP channels.